მარცხენა წინაგულის მოცულობის ცვლილებები 10-11 კვირის, საშუალო ინტენსივობით დატვირთულ, ჯანმრთელ თეთრ ექსპერიმენტულ ვირთაგვებში
DOI:
https://doi.org/10.52340/jecm.2022.06.020საკვანძო სიტყვები:
rat, ventricle, treadmill exercise, cardiomyocyte, heartანოტაცია
კვლევის მიზანს წარმოადგენდა 10-11 კვირის ჯანმრთელ ვირთაგვებში ტრედმილით 10 კვირიანი დოზირებული, საშუალო ინტენსივობის დატვირთვის შემდეგ ექოსკოპიურად მარცხენა წინაგულის მოცულობის შეფასება. ზოგადად, ფიზიკური დატვირთვა წარმოადგენს ცნობილ პრევენციულ მეთოდს კარდიოვასკულური დაავადებების რისკ-ფაქტორთა შემცირების კუთხით. ჩვენ საკუთარი კვლევის ფარგლებში უზრუნველვყავით მამრობითი სქესის 10-11 კვირის ჯანმრთელი ვირთაგვების საშუალო ინტენსივობის ფიზიკური დატვირთვა ტრედმილით 10 კვირის მანძილზე და შემდეგ შევისწავლეთ გულის ფუნქციური პარამეტრები ექოკარდიოგრაფიულად, რათა შეგვეფასებინა ჯანმრთელი გულის მარცხენა წინაგულის მოცულობაზე ფიზიკური დატვირთვის ზეგავლენა. ვირთაგვები დავყავით 2 ჯგუფად: 1) საკონტროლო ჯგუფი, რომელიც არ იღებდა დატვირთვას (n=6); 2) საკვლევი ჯგუფი, რომელიც ასრულებდა ტრედმილზე დღეში 6 სრულ ბრუნს, შუალედებში 2 წუთიანი აქტიური შესვენებით, კვირაში 5 დღე (ტრედმილის სიჩქარე 12მ/წთ, დახრილობა 200) – n=6.გულის ფუნქციური მაჩვენებლები შეფასებული იქნა ტრანსთორაკალური ექოკარდიოგრაფიის საშუალებით ორჯერადად (კვლევის დაწყებისას და 10 კვირის შემდეგ). საკვლევი ჯგუფის ვირთაგვებში გაზრდილი იყო მარცხენა წინაგულის მოცულობა, იგივე სქესისა და ასაკის არატრენირებული ვირთაგვების მონაცემებთან შედარებით. აღნიშნული კვლევა შეიძლება ჩაითვალოს კიდევ ერთ წინ გადადგმულ ნაბიჯად საშუალო ინტენსივობის ფიზიკური დატვირთვის ფონზე განვითარებული კომპენსატორული ძვრების კვლევის საქმეში.
Downloads
წყაროები
Egorova MV, Afanas'ev SA, Popov SV. A simple method for isolation of cardiomyocytes from adult rat heart. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2005;140(3):370–373.
Roth GM, Bader DM, Pfaltzgraff ER. Isolation and physiological analysis of mouse cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. 2014. p. e51109.
Iwasaki YK, et al. Atrial fibrillation promotion with long-term repetitive obstructive sleep apnea in a rat model. Journal of the American College of Cardiology. 2014;64(19):2013–2023.
Melenovsky V, et al. Left atrial remodeling and function in advanced heart failure with preserved or reduced ejection fraction. Circulation: Heart Failure. 2015;8(2):295–303.
Conceicao G, Heinonen I, Lourenco AP, Duncker DJ, Falcao-Pires I. Animal models of heart failure with preserved ejection fraction. Netherlands Heart Journal. 2016;24(4):275–286
Yamaguchi, M.; Arakawa, M.; Tanaka, T.; Takaya, T.; Nagano, T.; Hirakawa, S. Study on left atrial contractile performance: Participation of Frank-Starling mechanism. Jpn. Circ. J. 1987, 51:1001–1009.
Anwar, A.M.; Geleijnse, M.L.; Soliman, O.I.I.; Nemes, A.; ten Cate, F.J. Left atrial Frank–Starling law assessed by real-time, three dimensional echocardiographic left atrial volume changes. Heart 2007, 93:1393–1397.
David DJ, Renard CE, Jolliet P, Hascoet M, Bourin M. Antidepressant-like effects in various mice strains in the forced swimming test. Psychopharmacology (Berl) 2003;166:373–382.
Charles Thomas, Stefan Marcaletti, Jérôme N. Feige, Assessment of Spontaneous Locomotor and Running Activity in Mice, Current Protocols in Mouse Biology, 10.1002/9780470
Oh JK, Appleton CP, Hatle LK, Nishimura RA, Seward JB, Tajik AJ. The noninvasive assessment of left ventricular diastolic function with two-dimensional and Doppler echocardiography. J Am Soc Echocardiogr. 1997; 10:246 – 270. doi:10.1016/S0894-7317(97)70062
Zhang XQ, Song JL, Rothblum LI, Lun MY, Wang XJ, Ding F, et al. Overexpression of Na+/Ca2+ exchanger alters contractility and SR Ca2+ content in adult rat myocytes. Amer J Physiol. 2001;281:H2079–H2088.
Monocyte chemoattractant protein-1 is upregulated in rats with volume-overload congestive heart failure. Circulation. 2000; 102: 1315-1322
Schultz JEJ, Glascock BJ, Witt SA, Nieman ML, Nattamai KJ, Liu LH, Lorenz JN, et al. Accelerated onset of heart failure in mice during pressure overload with chronically decreased SERCA2 calcium pump activity. Am J Physiol. 2004; 286:H1146–H1153.
Hilgemann DW. New insights into the molecular and cellular workings of the cardiac Na+/Ca2+ exchanger. Am J Physiol. 2004; 287:C1167–C1172.
Terracciano CMN, DeSouza AI, Philipson KD, MacLeod KT. Na+ - Ca2+ exchange and sarcoplasmic reticular Ca2+ regulation in ventricular myocytes overexpressing the Na+ - Ca2+ exchanger. J Physiol London. 1998; 512:651–67.
Janssen BJ, De Celle T, Debets JJ, Brouns AE, Callahan MF, Smith TL. Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2004; 287: H1618 – H1624. doi:10.1152/ajpheart.01192.2003
Kemi O. J., Haram P. M., Wisløff U., Ellingsen Ø. (2004). Aerobic fitness is associated with cardiomyocyte contractile capacity and endothelial function in exercise training and detraining. Circulation 109 2897–2904.
Konhilas J. P., Maass A. H., Luckey S. W., Stauffer B. L., Olson E. N., Leinwand L. A. (2004). Sex modifies exercise and cardiac adaptation in mice. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287 H2768–H2776.
Ljones K., Ness H. O., Solvang-Garten K., Gaustad S. E., Hoydal M. A. (2017). Acute exhaustive aerobic exercise training impair cardiomyocyte function and calcium handling in Sprague-Dawley rats. PLoS One 12:e0173449. 10.1371/journal.pone.0173449
Mutlak M., Schlesinger-Laufer M., Haas T., Shofti R., Ballan N., Lewis Y. E., et al. (2018). Extracellular signal-regulated kinase (ERK) activation preserves cardiac function in pressure overload induced hypertrophy. Int. J. Cardiol. 270: 204–213
Pagan L. U., Damatto R. L., Gomes M. J., Lima A. R. R., Cezar M. D. M., Damatto F. C., et al. (2019). Low-intensity aerobic exercise improves cardiac remodeling of adult spontaneously hypertensive rats. J. Cell Mol. Med. 23: 6504–6507
Olah A., Nemeth B. T., Matyas C., Horvath E. M., Hidi L., Birtalan E., et al. (2015). Cardiac effects of acute exhaustive exercise in a rat model. Int. J. Cardiol. 182: 258–266. 10.1016/j.ijcard.2014.12.045
ჩამოტვირთვები
გამოქვეყნებული
როგორ უნდა ციტირება
გამოცემა
სექცია
